商品代碼:1635598

  • 瑞創 微流控芯片恒溫灌流儀 細胞培養的實時監控和功能分析
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    商品詳細說明

    RISTRON微流控芯片恒溫灌流儀

    —— Make your microfluidic-based cellexperimentssimple

    RISTRON微流控芯片恒溫灌流儀集成瞭精密的微量液體操控系統和透明的顯微鏡恒溫平臺,通過計算機精確控制液體的流量、流速、時間及溫度,在培養箱外重塑細胞體內生長微環境條件,適合於微流控芯片上的細胞灌註培養及分析,結合常規倒置顯微鏡,實現細胞培養的實時監控和功能分析。

    系統組成

    微流註射泵系統、透明的顯微鏡恒溫平臺、軟件系統

    系統參數

    適配顯微鏡

    所有倒置顯微鏡

    註射泵通道數量

    1、2、4、8

    流量范圍

    0-681.73ml/min

    註射器類型

    0.5ml-200ml

    工作模式

    吸液模式、註射模式、推拉交替工作模式

    控制方式

    觸摸屏或PC電腦雙式可控

    流量控制精度

    當>30%滿行程時,控制誤差≤±0.1%

    系統接口

    USB

    控溫范圍

    室溫±45℃

    控溫精度

    ±0.2℃

    升溫時間(25℃至37℃)

    <5min

    儀器主機尺寸

    330mm×280mm×185mm

    恒溫平臺尺寸

    160mm×126mm×100mm

    恒溫平臺加熱面積

    100mm×80mm

    恒溫平臺溫度均勻性

    ±0.1℃

    適宜的微流控芯片材料

    玻璃-玻璃、玻璃-PDMS、PDMS-PDMS

    產品主要性能特點:

    n精確控制液體流速和溫度,為培養箱外細胞灌流式培養提供合適條件,微流控芯片上細胞持續灌流培養達3天以上;

    n根據實驗需要編寫任務(每個任務可設定8個步驟),每個步驟可精確控制流量、流速、時間及溫度,便於實現微流控芯片預處理及自動化細胞培養、換藥操作;

    n培養過程可同時進行相關加藥、染色等處理,能實現細胞功能分析研究;

    n配合倒置顯微鏡,實現細胞長時間的實時動態監控成像;

    n恒溫平臺加熱面積大且溫度分佈均勻,適合常規的培養皿恒溫,也適合多片微流控芯片並行實驗。

    產品應用方向:

    微流控芯片上細胞灌註式3D培養:將細胞/瓊脂糖混合液加載在微流控芯片上,設置培養液灌流速度和恒溫平臺溫度,連續灌流培養3天,用熒光染料檢測細胞的活性,綠色表示存活的細胞。

    動態研究細胞-細胞間相互作用:在微流控芯片微通道進行血管內皮細胞培養,研究不同培養條件下(剪切力、血清濃度、炎癥因子、糖濃度)的血管內皮細胞與單核細胞、或腫瘤細胞相互作用。

    細胞粘附力研究:在微流控芯片微通道中加載細胞懸液,設定不同的剪切力環境,通過顯微鏡高速攝像機動態獲取細胞形變圖像,研究細胞貼壁時間、材料、細胞外基質、溫度等對細胞粘度力的影響。

    流體剪切力對細胞形態及功能的影響:微流控芯片上培養細胞,培養過程設定不同的剪切力環境,不同時間點後觀察細胞應力纖維的形成和形態,研究流體剪切力對細胞形態及功能的影響。右圖a、b、c分別為三個不同等級的流體剪切力對細胞應力纖維形成的影響。

    定量研究細胞與不同材料間的粘附力大小:將細胞導入不同材料修飾後的平板流動腔,設定不同的剪切力環境,以能夠沖掉50%粘附細胞代表細胞粘附臨界剪切力,定量研究不同細胞與不同材料間的粘附力大小。

    細胞吞噬和外排藥物動力學研究:將細胞加載在微流控芯片上,設置合適的溫度值以維持細胞正常生理狀態,在芯片上加載或替換熒光性藥物,用熒光顯微鏡實時記錄細胞內熒光強度的變化,分析細胞吞噬和外排藥物動力學。左圖為肝癌細胞吞噬道諾黴素的熒光圖像,右圖為2h後肝癌細胞的熒光圖像。

    技術參考文獻:

    [1]Christophis C, Grunze M, Rosenhahn A. Quantification of the adhesion strength of fibroblast cells on ethylene glycol terminated self-assembled monolayers by a microfluidic shear force assay[J]. Physical Chemistry Chemical Physics, 2010, 12(17): 4498-4504.

    [2]Avraham-Chakim L, Elad D, Zaretsky U, et al. Fluid-Flow Induced Wall Shear Stress and Epithelial Ovarian Cancer Peritoneal Spreading[J]. PloS one, 2013, 8(4): e60965.

    [3]Christ K V, Williamson K B, Masters K S, et al. Measurement of single-cell adhesion strength using a microfluidic assay[J]. Biomedical microdevices, 2010, 12(3): 443-455.

    [4]Tsai M, Kita A, Leach J, et al. In vitro modeling of the microvascular occlusion and thrombosis that occur in hematologic diseases using microfluidic technology[J]. The Journal of clinical investigation, 2012, 122(1): 408.

    [5]Wu M H, Chang Y H, Liu Y T, et al. Development of high throughput microfluidic cell culture chip for perfusion 3-dimensional cell culture-based chemosensitivity assay[J]. Sensors and Actuators B: Chemical, 2011, 155(1): 397-407.

    [6]Li X J, Chen Y, Li P C H. A simple and fast microfluidic approach of same-single-cell analysis (SASCA) for the study of multidrug resistance modulation in cancer cells[J]. Lab on a chip, 2011, 11(7): 1378-1384.



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